T/CVMA 351-2026 犬猫桡神经、尺神经、正中神经、肌皮神经阻滞技术规范

　　ICS 11.220 CCS B 41

　　团 体 标 准

　　T/CVMA 351—2026

　　犬猫桡神经、尺神经、正中神经、肌皮神经

　　阻滞技术规范

　　Technical specification for radial, ulnar, median, and muscu locutaneous

　　nerve b locks in dogs and cats

　　2026 - 1 - 28 发布 2026 - 1 - 28 实施

　　中国兽医协会 发 布

　　T/CVMA 351—2026

　　前 言

　　本文件按照 GB/T 1.1—2020《标准化工作导则 第 1 部分：标准化文件的结构和起草规则》的规定起草。

　　请注意本文件的某些内容可能涉及专利。本文件的发布机构不承担识别专利的责任。

　　本文件由北京中农大动物医院有限公司提出。

　　本文件由中国兽医协会归口。

　　本文件起草单位：北京中农大动物医院有限公司，中国农业大学，北京小动物诊疗行业协会。

　　本文件主要起草人：杨欢、王美磷、林婧、唐娜、成安慰。

　　I

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　　引 言

　　神经丛阻滞是一种通过阻断混合性神经丛(包括感觉、运动及交感神经纤维)传导功能以实现治疗目的的介入技术。该技术广泛应用于手术麻醉与疼痛管理，相较于全身麻醉，其对呼吸及循环系统影响较小，且操作相对简便。为规范并推广犬猫桡神经、尺神经、正中神经和肌皮神经阻滞技术的临床应用，帮助临床兽医及兽医麻醉医师准确评估并制定个体化麻醉方案，特制定本团体标准。

　　II

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　　犬猫桡神经、尺神经、正中神经、肌皮神经阻滞操作规范

　　1 范围

　　本文件规定了进行犬猫桡神经、尺神经、正中神经和肌皮神经阻滞技术的操作方法、药物选择、并发症处理及禁忌症等内容。

　　本文件适用于动物诊疗机构及兽医人员为犬猫前肢远端手术(包括腕关节、指部及爪部手术)实施局部麻醉与镇痛。与臂丛神经阻滞相比，本技术可更精准地阻滞远端神经，有助于减少相关并发症。

　　注：前肢远端手术包括腕关节、指部和爪部的手术。

　　2 规范性引用文件

　　本文件没有规范性引用文件。

　　3 术语和定义

　　下列术语和定义适用于本文件。

　　3.1

　　桡神经、尺神经、正中神经和肌皮神经 RUMM

　　为桡神经(radial nerve, R)、尺神经(ulnar nerve, U)、正中神经(median nerve, M)、肌皮神经(musculocutaneous nerve, Mc)的英文首字母缩写，统称为上述四支神经。

　　3.2

　　盲探法 Blind technique

　　指在不借助可视化或神经定位设备的情况下，仅依靠操作者的解剖知识、手感及临床经验进行穿刺或神经阻滞的操作方法。该操作对操作者解剖学基础要求极高，存在一定的组织损伤、神经误刺等风险，多用于简单且解剖标志明确的部位。

　　3.3

　　神经刺激器法 Nerve stimulator technique

　　一种神经定位辅助技术，通过电极释放可调电流刺激目标神经，引发支配肌肉的节律性收缩，从而精确定位神经，指导局麻药注射，有助于降低神经损伤风险并提高阻滞成功率。

　　3.4

　　超声介导法 Ultrasound-guided technique

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　　指在超声实时成像引导下，可视化目标组织(如神经、血管、穿刺针等)，进而指导穿刺路径与药物注射范围的操作技术。该技术可实现 “可视化” 操作，大幅提高穿刺和给药的精准度，减少血管、神经等周围组织的意外损伤，是目前临床(含兽医临床)中安全性和有效性较高的操作辅助手段。

　　4 RUMM 神经阻滞操作技术

　　4.1 材料准备

　　神经刺激器法需准备：外周神经刺激器、20 G ~ 22 G 神经刺激针。超声介导法需准备：超声机(配备 6 MHz ~ 13 MHz 线阵探头)、20 G ~ 22 G 神经阻滞针。通用材料包括：无菌手套、注射器与针头、局部麻醉药。

　　4.2 动物准备

　　手术动物做好以下准备工作：

　　a) 动物全身麻醉或深度镇静。

　　b) 手术部位剃毛。剃毛范围：头侧至颈部中段，背侧至背正中心线，尾侧至肩胛骨后缘约10 cm，内侧至腹正中线，远端至腕关节。

　　c) 使用4 % 葡萄糖酸氯己定溶液及75 % 酒精进行皮肤刷洗消毒。

　　4.3 盲探法/神经刺激器法

　　盲探法/神经刺激器法按以下操作进行：

　　a) 使动物将患肢朝上侧卧，肘关节屈曲90度。桡神经阻滞进针点位于前肢外侧，肱三头肌长头与臂肌之间，肱骨尾侧下端1/3处(见图1)。

　　图1 桡神经阻滞盲探法/神经刺激器法进针通路示意图

　　b) 一手从头侧固定肱骨，拇指定位至大结节与外上髁连线的 2/3 处(靠近肱骨尾端)。自尾侧进针，针尖与水平面呈 45 °角，且与肱骨长轴保持垂直。穿透肱三头肌长头并触及肱骨骨面后，稍退针(约1 ~ 2 mm)调整位置。

　　c) 使用神经刺激器时，若针尖刺激桡神经分布区域，可观察到腕关节伸展。初始电流设为2 mA，逐步降低并微调针尖位置。若电流降至 0.2 mA 以下仍出现明显运动反应，提示针尖可能位

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　　于神经束内，此时严禁注药。应缓慢退针至运动反应消失，确认针尖位于神经束外后方可注射。

　　d) 尺神经、正中神经和肌皮神经阻滞的进针位置位于前肢的内侧，将动物更换体位为患肢朝下侧卧。在肱骨中点处肱二头肌和肱三头肌内侧头之间触诊臂动脉，穿刺部位在肱骨中点尾侧和臂动脉的头尾侧(见图2)。

　　图2 肌皮、正中、尺神经阻滞盲探/神经刺激器法进针通路示意图

　　e) 用指压在肱骨上，向头侧推动二头肌和臂动脉。从与肱骨长轴垂直的尾侧以45°角入针，使其与肱骨接触，退针少许。

　　f) 使用神经刺激器时，若针尖刺激尺神经或正中神经分布区域，可诱发前肢腕关节或前臂屈曲反应。随后将电流从 2 mA 逐步降低，同时微调针尖位置，直至电流降至 0.2 mA 时无明显运动反应，以此确保注射于神经束外，避免神经内损伤。

　　4.4 超声介导法

　　4.4.1 内侧通路(犬)

　　超声介导法内侧通路建立按以下操作进行：

　　a) 动物背卧位，前肢外展90°, 并向外旋转。高频线性探头置于前肢肱骨内侧的肱骨头水平，横切肱骨长轴，探头标记指向头侧(见图3)。

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　　图3 超声介导下RUMM阻滞的内侧通路示意图

　　b) 借助彩色血流多普勒帮助识别血管，以肱二头肌和喙肱肌、内侧胸肌和肱三头肌外侧头为边界确定腋鞘位置后，倾斜探头，显示RUMM神经、血管和腋鞘(见图4)。

　　a)内侧通路下超声图像 b)内侧通路结构模式图

　　标引序号说明：

　　AA——腋动脉;

　　AV——腋静脉;

　　Mc——肌皮神经;

　　M——正中神经;

　　U——尺神经;

　　R——桡神经。

　　注：白色箭头指示为神经周围的腋鞘，AV 容易受压且小于 AA。

　　图4 内侧通路桡神经(R)、尺神经(U)、正中神经(M)及肌皮神经(Mc)B超声像图

　　c) 超声介导下使用脊髓穿刺针平行于探头从头向尾侧穿过肱二头肌肌腹进针，在可视针头下分别向腋动脉头、尾侧的肌皮神经、桡神经、正中-尺神经周围进行阻滞。

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　　4.4.2 外侧通路(猫)

　　超声介导法外侧通路建立按以下操作进行：

　　a) 动物患肢朝上侧卧，在两前肢之间使用垫料支撑使患肢保持水平。高频线性探头置于肱三头肌外侧，在上臂近端1/3处，垂直于肱骨长轴，探头标记指向头侧(见图5)。

　　图5 超声介导下RUMM阻滞的外侧通路示意图

　　b) 调整扫描深度，确保肱二头肌肌腹显示在图像中心。识别出肱骨和肱二头肌后，探头向尾部滑动，借助彩色血流多普勒帮助识别血管，调整探头至充分显示包含RUMM神经和臂动静脉的神经血管鞘(见图6)。

　　a)外侧通路下超声图像 b)外侧通路结构模式图

　　标引序号说明：

　　BA——臂动脉;

　　BV——臂静脉;

　　Mc——肌皮神经;

　　M——正中神经;

　　U——尺神经;

　　R——桡神经。

　　注：白色箭头指示为神经周围的腋鞘，BV 容易受压且小于 BA。

　　图 6 外侧通路桡神经(R)、尺神经(U)、正中神经(M)及肌皮神经(Mc)的超声图像

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　　4.5 局麻药物选择与给予

　　药物推荐使用 0.5 % 布比卡因或 2 % 利多卡因。布比卡因最大剂量：犬 ≤2 mg/kg，猫 ≤1mg/kg;利多卡因最大剂量：犬 ≤4 mg/kg，猫 ≤2mg/kg。

　　推荐注射量：桡神经 0.1 mL/kg;肌皮神经、正中神经、尺神经各 0.15 mL/kg。可根据需要稀释局麻药原液。注射前务必回抽，确认无血后方可注射，以避免血管内注射。

　　4.6 可能并发症及处理方案

　　4.6.1 穿刺可能导致血肿，应避免反复穿刺。若出现血肿，可局部压迫 2 ~ 5 min 止血。

　　4.6.2 血管内注射风险：注射前应回抽确认无血。注射后密切监测动物循环与呼吸指标，如有异常及时处置。

　　4.6.3 术后因神经仍被阻滞，运动及感觉功能未恢复可能导致二次损害，术后仍需密切监护并做好保护措施。

　　4.7 禁忌症

　　4.7.1 绝对禁忌症：穿刺区或邻近组织感染;已知或疑似凝血功能障碍;对局麻药或其添加剂过敏;目标神经或邻近结构存在断裂、肿瘤或严重病变。

　　4.7.2 相对禁忌症：严重全身性疾病(如休克、心肺功能不全、严重电解质紊乱);穿刺肢体存在骨折或畸形等解剖异常;术后需立即评估前肢神经功能者。

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　　参考文献

　　[1] Luis C, Matt R R. Small animal regional anesthesia and analgesia[M]. Oxford: Wiley-Blackwell, 2013: 159-161.

　　[2] Phillip L, Turi K A, Gwen C C, et al. Handbook of Small Animal Regional Anesthesia and Analgesia Techniques[M]. Oxford: Wiley-Blackwell, 2016: 60-61.

　　[3] Tayari H, Otero P, Rossetti A, Breghi G, Briganti A. Proximal RUMM block in dogs: preliminary results of cadaveric and clinical studies[J]. Veterinary Anesthesia and Analgesia, 2019, 46(3): 384-394.

　　[4] Otero P E, Fuensalida S E, Sánchez F, et al. Development of a lateral ultrasound-guided approach for the proximal radial, ulnar, median and musculocutaneous (RUMM) nerve block in cats[J]. Veterinary Anesthesia and Analgesia, 2020, 47(5): 686-693.

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